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實(shí)時(shí)熒光定量 PCR:了解 Ct

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實(shí)時(shí)熒光定量 PCR:了解 Ct


簡(jiǎn)介

實(shí)時(shí)熒光定量 PCR,又稱為定量 PCR 或 qPCR,可以為測(cè)定樣品中的靶標(biāo)序列或基因數(shù)量提供簡(jiǎn)單、簡(jiǎn)潔的方法。該方法高度簡(jiǎn)化,有時(shí)會(huì)忽略實(shí)現(xiàn)方法方面的關(guān)鍵因素,因此導(dǎo)致出現(xiàn)問(wèn)題。本文將重點(diǎn)強(qiáng)調(diào)設(shè)置和評(píng)估實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 反應(yīng)時(shí)必須考慮的這些因素。






 

圖1.實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 數(shù)據(jù)的圖形表示。Rn 是報(bào)告基團(tuán)染料的熒光除以惰性參比染料的熒光的比值;即,Rn 是歸一化到 Applied Biosystems? ROX? 染料的熒光信號(hào)的報(bào)告基團(tuán)信號(hào)。(A) 在此視圖中,Rn 根據(jù) PCR 循環(huán)數(shù)進(jìn)行繪制。(B) ΔRn 為 Rn 減去基線;ΔRn 根據(jù) PCR 循環(huán)數(shù)進(jìn)行繪制。(C) 擴(kuò)增圖顯示對(duì)數(shù) (Δrn) 隨 PCR 循環(huán)數(shù)的變化。



可能影響 Ct 的因素

Ct(閾值循環(huán))是擴(kuò)增曲線與閾值線的交叉點(diǎn)(圖 1B)。它是 PCR 反應(yīng)中靶標(biāo)濃度的相對(duì)測(cè)量。除靶標(biāo)濃度之外,還有很多因素會(huì)影響 Ct 的絕對(duì)值。我們將要討論最常見(jiàn)的可能影響 Ct 值的非模板依賴性因素,并描述如何評(píng)估實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 反應(yīng)的性能。

上述圖 1 顯示實(shí)時(shí)反應(yīng)擴(kuò)增圖的幾個(gè)參數(shù)。圖 1B 中的指數(shù)期對(duì)應(yīng)于圖 1C 中的線性期。在圖 1C 中,閾值必須設(shè)在擴(kuò)增圖的線性期中。C值隨模板量減少而增加。然而,反應(yīng)混合物或儀器中的任何干擾,只要能影響與 Ct 計(jì)算相關(guān)的熒光測(cè)定,都會(huì)使 C值產(chǎn)生非模板依賴性的變化。因此,在不同條件下或用不同試劑進(jìn)行的 PCR 反應(yīng)產(chǎn)生的 C值不可以直接進(jìn)行比較。 

圖 2.  在使用具有相同 ROX 水平的兩種預(yù)混液的一次檢測(cè)中獲得的原始熒光數(shù)據(jù)。信號(hào)差異是由預(yù)混液的成分造成的。使用 Applied Biosystems? VIC?/MGB 探針在 Applied Biosystems? 7900HT 快速實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 系統(tǒng)上執(zhí)行此反應(yīng)。x 軸顯示熒光基團(tuán)的的發(fā)射波長(zhǎng),y 軸顯示發(fā)射強(qiáng)度。

預(yù)混液成分的影響

任何分子的熒光發(fā)射都受環(huán)境因素的影響,比如溶液的 pH 值和鹽濃度。圖 2 顯示某個(gè) Applied Biosystems? TaqMan? 探針在兩種不同預(yù)混液背景下的原始熒光數(shù)據(jù)。請(qǐng)注意,盡管兩組反應(yīng)的靶標(biāo)、探針和 ROX 染料濃度都相同,預(yù)混液 A 中的熒光強(qiáng)度更高。

因此,如圖 3 所示,產(chǎn)生的 ΔRn 值也不同。請(qǐng)注意,熒光信號(hào)基線屬于非模板依賴性因素,兩種預(yù)混液的基線是不同的(圖 3A)。Ct 值的變化并沒(méi)有反映出反應(yīng)系統(tǒng)的整體性能(圖 3B)。靈敏度相當(dāng)?shù)念A(yù)混液產(chǎn)生的 C絕對(duì)值可能不同。

圖 3.使用預(yù)混液 A 和預(yù)混液 B 在等量的人類(lèi) gDNA 中進(jìn)行 RNase P 擴(kuò)增。(A) Rn 根據(jù)循環(huán)數(shù)進(jìn)行繪制,并且顯示兩個(gè)反應(yīng)的基線。(B) 對(duì)數(shù) (ΔRn) 根據(jù)循環(huán)數(shù)進(jìn)行繪制。兩種預(yù)混液的閾值(綠線)設(shè)定為相同水平。對(duì)于相同濃度的靶標(biāo)而言,預(yù)混液 B 的 Ct 值 (CtB) 早于預(yù)混液 A 的相應(yīng)值 (CtA),表明預(yù)混液 B 的基線較低。使用 Applied Biosystems? 7500 實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 系統(tǒng)執(zhí)行所有擴(kuò)增。

ROX 惰性參比染料

Rn 值是由 Applied Biosystems? FAM? 染料的熒光除以 ROX 染料的熒光而計(jì)算得出的比率。因此,假定 FAM 染料產(chǎn)生的熒光信號(hào)保持不變,ROX 染料量越少,產(chǎn)生的 Rn 值就越高。這將導(dǎo)致 Rn 基線上升,以及隨后 ΔRn 的減少和 Ct 值的變化。通過(guò)降低 ROX 染料水平而得到不同 Ct 值,沒(méi)有對(duì)反應(yīng)的真實(shí)靈敏度產(chǎn)生任何影響,卻有著意想不到的后果。如圖 4 所示,降低 ROX 染料的濃度可能會(huì)增加 C值的標(biāo)準(zhǔn)差。標(biāo)準(zhǔn)差越大,分辨靶濃度之間的細(xì)微區(qū)別的可信度就越低(參加下文的精確度一節(jié))。

圖 4.  使用包含 3 種不同濃度的 ROX 染料的預(yù)混液對(duì) TGF-β 進(jìn)行擴(kuò)增。顯示 (A) Ct 值和 (B) 標(biāo)準(zhǔn)差隨 ROX 染料濃度的變化。降低 ROX 染料濃度導(dǎo)致 Ct 出現(xiàn)得更早,但是會(huì)增大標(biāo)準(zhǔn)差。使用 Applied Biosystems 7500 實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 系統(tǒng)執(zhí)行所有擴(kuò)增。

PCR 反應(yīng)的效率

PCR 反應(yīng)的效率也會(huì)影響 Ct 值。在低效率條件下進(jìn)行連續(xù)稀釋擴(kuò)增,與高效率條件下相比,可能會(huì)產(chǎn)生斜率不同的標(biāo)準(zhǔn)曲線。在圖 5 中,兩個(gè)樣品(X 和 Y)分別在低效率和高效率條件下擴(kuò)增,在靶濃度相同的條件下得到了不同的 Ct 值。在此示例中,盡管高效率條件(圖 5 中的藍(lán)色曲線)在高濃度時(shí)產(chǎn)生的 C值更晚,但它在靶濃度低時(shí)卻更為靈敏。PCR 效率取決于實(shí)驗(yàn)、預(yù)混液性能和樣品質(zhì)量。通常情況下,反應(yīng)效率在 90-110% 之間都是可以接受的。另一方面,假定所有其他因素如儀器、試劑和實(shí)驗(yàn)完全相同, 該效率也有助于得出第一個(gè)樣品的模板量更少的結(jié)論。然而,如果產(chǎn)生兩個(gè) Ct值使用的是不同的儀器、試劑、引物和探針或反應(yīng)體積,該結(jié)論就不成立。因此,只有在使用上文定義的相同反應(yīng)條件來(lái)比較實(shí)驗(yàn)時(shí),Ct 絕對(duì)值的比較才有意義。

圖 5.C隨 PCR 效率發(fā)生變化。藍(lán)色標(biāo)準(zhǔn)曲線的效率為 100%(斜率為 –3.3)。綠色標(biāo)準(zhǔn)曲線的效率為 78%(斜率為 –4)。與高效率條件相比(藍(lán)色),在低效率條件下(綠色),擴(kuò)增量 Y 使 Ct 出現(xiàn)得更早。較低擴(kuò)增量 (X) 時(shí)則情況相反,與高效率條件(藍(lán)色)相比,低效率條件(綠色)使 Ct 出現(xiàn)得更晚。

如何評(píng)估實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 反應(yīng)的性能

為了比較不同條件(例如兩種不同的預(yù)混液或兩臺(tái)不同的儀器)下的兩個(gè)反應(yīng),必須評(píng)估以下參數(shù)。

動(dòng)態(tài)范圍

為了正確地評(píng)估 PCR 效率,至少需要 3 次重復(fù)和至少 5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)的模板濃度。圖 6 說(shuō)了建議此精確級(jí)別的理由,它證明在 1 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)與 5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)范圍內(nèi)測(cè)試稀釋模板時(shí),獲得的斜率或效率可能產(chǎn)生數(shù)學(xué)偏差。因此,即使檢測(cè) 100% 有效,由于每個(gè)稀釋點(diǎn)都存在標(biāo)準(zhǔn)差,檢測(cè)一個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)的連續(xù)稀釋時(shí),可能獲得 70 至 170% 的范圍。在 5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)范圍內(nèi)做相同數(shù)量的稀釋點(diǎn)或重復(fù),可能的偏移只有 ±8%。這意味著在 5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)范圍內(nèi),如果效率為 94%,則該實(shí)驗(yàn)的效率范圍介于 88% 到 100% 之間。為了準(zhǔn)確測(cè)定 PCR 反應(yīng)的效率,必須進(jìn)行 5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)的連續(xù)稀釋。-3.3 ±10% 的斜率意味著效率達(dá)到 100% ±±10%。PCR 反應(yīng)效率越低,那么靈敏度越低。

R2 值

另一個(gè)評(píng)估 PCR 效率的關(guān)鍵參數(shù)是 R2,它是說(shuō)明如何使用一個(gè)數(shù)值預(yù)測(cè)另一個(gè)數(shù)值的相關(guān)程度的統(tǒng)計(jì)學(xué)術(shù)語(yǔ)。如果 R2 為 1,那么 Y 值 (Ct) 可以用來(lái)準(zhǔn)確預(yù)測(cè) X 值(圖7A)。如果 R2 為 0,那么就不能通過(guò) Y 值預(yù)測(cè) X 值(圖 7B)。R2 值 >0.99 表示兩個(gè)數(shù)值之間相關(guān)的置信度良好。

精確度

標(biāo)準(zhǔn)差(偏差的平方根)是最常用的精確度計(jì)量方法。如果許多數(shù)據(jù)點(diǎn)都靠近平均值,則標(biāo)準(zhǔn)差就?。蝗绻S多數(shù)據(jù)點(diǎn)都遠(yuǎn)離平均值,則標(biāo)準(zhǔn)差就大。

實(shí)際上,足夠多重復(fù)次數(shù)產(chǎn)生的數(shù)據(jù)集會(huì)形成大致的正態(tài)分布。這經(jīng)??赏ㄟ^(guò)經(jīng)典的中心極限定理來(lái)證明,該定理稱大量獨(dú)立同分布隨機(jī)變量的和在無(wú)限多時(shí)趨向于正態(tài)分布。如圖 8A 所示,約 68% 的值在平均值的 1 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差之內(nèi),約 95% 的值在平均值的 2 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差之內(nèi),約 99.7% 的值在平均值的 3 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差之內(nèi)。

如果 PCR 效率為 100%,那么 2 倍稀釋時(shí)兩個(gè)連續(xù)濃度之間的 Ct 差為1(圖 8B)。要在 99.7% 以上的情況下定量 2 倍稀釋,標(biāo)準(zhǔn)差必須 ≤0.167。標(biāo)準(zhǔn)差越大,分辨 2 倍稀釋的能力就越低。要在 95% 以上的情況下區(qū)別 2 倍稀釋,標(biāo)準(zhǔn)差必須 ≤0.250(圖 8C)。

靈敏度

無(wú)論 Ct 絕對(duì)值是多少,任何能夠有效擴(kuò)增和檢測(cè)起始模板拷貝數(shù)為 1 的系統(tǒng)都達(dá)到了靈敏度的極限。

如前文所述,效率是決定反應(yīng)靈敏度的關(guān)鍵因素(圖 5)。在檢測(cè)極低拷貝數(shù)時(shí)的另一個(gè)重要的考慮因素是,不能預(yù)期模板為正態(tài)分布。相反,它會(huì)遵循泊松分布,該分布預(yù)測(cè)在平均包含一個(gè)拷貝的起始模板的大量重復(fù)中,實(shí)際上約 37% 不含拷貝,僅有約 37% 含有 1 個(gè)拷貝,18% 應(yīng)包含 2 個(gè)拷貝(見(jiàn)圖 9)。因此,為了可靠地檢測(cè)低拷貝,必須做大量的重復(fù)實(shí)驗(yàn)來(lái)提供統(tǒng)計(jì)顯著性,以克服泊松分布的限制。

圖 6.  準(zhǔn)確計(jì)算 PCR 效率取決于連續(xù)稀釋所用模板量的范圍。對(duì)于具有 5 個(gè)稀釋點(diǎn)的 2 倍稀釋(橙色)而言,其可能的偏移高于具有 5 個(gè)稀釋點(diǎn)的 10 倍稀釋(藍(lán)色)。

 

圖 7.為 2 條直線計(jì)算出 R2 值的示例。(A) x 和 y 值直接相關(guān)。(B) x 和 y 值無(wú)關(guān)。

圖 8.正態(tài)分布和標(biāo)準(zhǔn)差。(A) 已顯示數(shù)據(jù)的正態(tài)分布。PCR 效率為 100% 時(shí),2 倍連續(xù)稀釋中的兩個(gè)連續(xù)樣品的平均值之間的 Ct 之差為1(樣品 X 和樣品 Y)。(B) 為了能夠在 99.7% 的情況下為兩個(gè)樣品定量,標(biāo)準(zhǔn)差必須低于 1 個(gè) C除以 6 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差的值 (1/6 = 0.167)。(C) 為了能夠在 95% 的情況下為兩個(gè)樣品定量,標(biāo)準(zhǔn)差必須低于 1 個(gè) C除以 4 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差的值 (1/4 = 0.25) 。

圖 9.低拷貝數(shù)的泊松分布。藍(lán)色曲線代表 3.3 pg DNA(1 個(gè) DNA 拷貝)的泊松分布。粉色曲線代表 6.6 pg DNA(1 個(gè)細(xì)胞,2 個(gè) DNA 拷貝)的泊松分布。

表1.實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 的性能評(píng)估。

因素建議標(biāo)準(zhǔn)
效率5 個(gè)數(shù)量級(jí)倍數(shù)的連續(xù)稀釋斜率:~ –3.3R2 >0.99
精確度最少 3 次重復(fù)標(biāo)準(zhǔn)差 <0.167
靈敏度泊松分布導(dǎo)致低拷貝數(shù)樣品輸入需要重復(fù)多次反應(yīng)統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)分析

結(jié)論

比較不同的反應(yīng)條件時(shí),使用效率、R2、精確度和靈敏度來(lái)確定 PCR 反應(yīng)的性能。為了精確嚴(yán)謹(jǐn)?shù)卦u(píng)估,表 1 中所列的所有因素都必須評(píng)估。除了這些因素,還必須評(píng)估和驗(yàn)證合適的實(shí)驗(yàn)對(duì)照(比如無(wú)模板對(duì)照、無(wú) RT 對(duì)照)及模板質(zhì)量。



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